ЛЕКАРСТВЕННЫЕ РАСТЕНИЯ КАК ИСТОЧНИК ПЕРСПЕКТИВНЫХ ФАРМАЦЕВТИЧЕСКИХ СУБСТАНЦИЙ ДЛЯ КОРРЕКЦИИ НАРУШЕНИЙ УГЛЕВОДНОГО ОБМЕНА

Скачать статью в PDF
DOI: https://doi.org/10.29296/25419218-2018-07-02
Номер журнала: 
7
Год издания: 
2018

С.В. Оковитый, С.М. Напалкова, М.Н. Повыдыш, В.Г. Лужанин, М.Ю. Гончаров, Г.П. Яковлев Санкт-Петербургский государственный химико-фармацевтический университет; Российская Федерация, 197376, Санкт-Петербург, ул. проф. Попова, д. 14

Выделение индивидуальных биологически активных веществ (БАВ) и их очищенных комплексов из растительного сырья с последующим определением их безопасности и специфической активности является одним из перспективных подходов к созданию новых средств для профилактики и лечения заболеваний, связанных с нарушениями углеводного обмена, в частности сахарного диабета. В современных исследованиях особое внимание уделяется выявлению механизмов действия индивидуальных соединений растительного происхождения. Основные механизмы действия: ингибирование ряда ферментов, прямое и опосредованное влияние на поглощение и транспорт глюкозы, увеличение пролиферации β-клеток и секреции инсулина, а также антиоксидантный эффект. Приведены данные о лекарственных растениях и их компонентах, обладающих в эксперименте активностью на разных этапах развития патологии и доказанных механизмах их действия. Показано, что на нарушения углеводного обмена оказывают влияние извлечения из растений различных семейств, содержащих такие группы веществ, как флаваны, халконы, катехины, алкалоиды, сесквитерпеновые лактоны, тритерпеноиды.
Ключевые слова: 
углеводный обмен
лекарственные растения
биологически активные вещества
Для цитирования: 
Оковитый С.В., Напалкова С.М., Повыдыш М.Н., Лужанин В.Г., Гончаров М.Ю., Яковлев Г.П. ЛЕКАРСТВЕННЫЕ РАСТЕНИЯ КАК ИСТОЧНИК ПЕРСПЕКТИВНЫХ ФАРМАЦЕВТИЧЕСКИХ СУБСТАНЦИЙ ДЛЯ КОРРЕКЦИИ НАРУШЕНИЙ УГЛЕВОДНОГО ОБМЕНА . Фармация, 2018; 67 (7): 8-13https://doi.org/10.29296/25419218-2018-07-02
Список литературы: 
  1. Shaw J.E., Sicree R.A., Zimmet P.Z. Global estimates of the prevalence of diabet for 2010 and 2030. Diabetes Res Clin Pract., 2010; 87(1): 4–14.
  2. Алгоритмы специализированной медицинской помощи больным сахарным диабетом. Под ред. И.И. Дедова. М.: УП ПРИНТ, 2017; 112. [Algorithms of specialized medical care for patients with diabetes mellitus (by ed. I.I. Dedov). Moscow: UP PRINT, 2017; 112 (in Russian)].
  3. Дедов И.И., Шестакова М.В., Галстян Г.Р. Распространенность сахарного диабета 2 типа у взрослого населения России (исследование NATION). Сахарный диабет, 2016; 19 (2): 104–12. [Dedov I.I., Shestakova M.V., Galstjan G.R. The prevalence of type 2 diabetes in the adult population of Russia (NATION study). Saharnyj diabet, 2016; 19 (2): 104–12 (in Russian)].
  4. Ehrenkranz J.R., Lewis N.G., Kahn C.R., Roth J. Phlorizin: a review. Diabetes Metab. Res. Rev., 2005; 21, (1): 31–8.
  5. Isaji M. Sodium-glucose cotransporter inhibitors for diabetes. Curr. Opin. Investig. Drugs., 2007; 8 (4): 285–92.
  6. Picot C.M., Subratty A.H., Mahomoodally M.F. Inhibitory potential of five traditionally used native antidiabetic medicinal plants on α-amylase, α-glucosidase, glucose entrapment, and amylolysis kinetics in vitro. Adv. Pharmacol. Sci., 2014; 739–834.
  7. Melzig M.F., Funke I. Pflanzliche Alpha-Amylasehemmer – eine Möglichkeit zur Phytotherapie bei Diabetes Mellitus Typ II? Wien Med. Wochenschr., 2007; 157: 320–24.
  8. Rahimzadeh M., Jahanshahi S., Moein S., Moein M.R. Evaluation of alphaamylase inhibition by Urtica dioica and Juglans regia extracts. Iran. J. Basic. Med. Sci., 2014; 17: 465–9.
  9. Li Y., Chen Y., Xiao C., Chen D., Xiao Y., Mei Z. Rapid screening and identification of α-amylase inhibitors from Garcinia xanthochymus using enzyme-immobilized magnetic nanoparticles coupled with HPLC and MS. J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life. Sci., 2014; 960: 166–73.
  10. Governa P., Baini G., Borgonetti V. et al. Phytotherapy in the management of diabetes: a review. Molecules., 2018; 23 (1): pii: E105.
  11. Akshatha V.J., Nalini M.S., DaSouza C., Prakash H.S. Streptomycete endophytes from anti-diabetic medicinal plants of theWestern Ghats inhibit α-amylase and promote glucose uptake. Lett Appl Microbiol., 2014; 58: 433–9.
  12. Ramírez G., Zavala M., Pérez J., Zamilpa A. In vitro screening of medicinal plants used in Mexico as antidiabetics with glucosidase and lipase inhibitory activities. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2012.
  13. El-Abhar H.S., Schaalan M.F. Phytotherapy in diabetes: Review on potential mechanistic perspectives.World. J. Diabetes., 2014; 5: 176–97.
  14. Bahmani M., Shirzad H., Mirhosseini M. et al. A review on ethnobotanical and therapeutic uses of Fenugreek (Trigonella foenum-graceum L.). J. Evid.-Based. Complement. Altern. Med., 2016; 21(1): 53–62.
  15. Wilcox G. Review article insulin and insulin resistance. Clin. Biochem. Rev., 2005; 26: 19–39.
  16. Sangeetha M.K., Priya C.D., Vasanthi H.R. Anti-diabetic property of Tinospora cordifolia and its active compound is mediated through the expression of Glut-4 in L6 myotubes. Phytomedicine., 2013; 20: 246–8.
  17. Kadan S., Saad B., Sasson Y., Zaid H. In vitro evaluations of cytotoxicity of eight antidiabetic medicinal plants and their effect on GLUT4 Translocation. Evid. Based. Complement. Alternat. Med., 2013; 2013: 549345.
  18. Wang L., Waltenberger B., Pferschy-Wenzig E.M. et al. Natural product agonists of peroxisome proliferator-activated receptor gamma (PPAR-γ): a review. Biochem. Pharmacol., 2014; 92: 73–89.
  19. Katz S.R., Newman R.A., Lansky E.P. Punica granatum: heuristic treatment for diabetes mellitus. J. Med. Food., 2007; 10: 213–7.
  20. Liv X.F., Meng Q.Y., Guo X.M. Effect of Rehmannia glutinosa water extraction on insulin resistance and gene expression of resistin in type 2 diabetes mellitus rats. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2007; 32: 2182–4.
  21. Seo J.B., Choe S.S., Jeong H.W. et al. Anti-obesity effects of Lysimachia foenum-graecum characterized by decreased adipogenesis and regulated lipid metabolism. Exp. Mol. Med., 2011; 43: 205–15.
  22. Kim Y.J., Choi M.S., Park Y.B. et al. Garcinia cambogia attenuates diet-induced adiposity but exacerbates hepatic collagen accumulation and inflammation. World. J. Gastroenterol., 2013; 19: 4689–701.
  23. Ilavenil S., Arasu M.V., Lee J.C. et al. Trigonelline attenuates the adipocyte differentiation and lipid accumulation in 3T3-L1 cells. Phytomedicine., 2014; 21: 758–65.
  24. Kim H.S., Sung H.Y., Kim M.S. et al. Oleanolic acid suppresses resistin induction in adipocytes by modulating Tyk-STAT signaling. Nutr. Res., 2013; 33: 144–53.
  25. Mauricio D. Inhibidores SGLT‑2: de la corteza del manzano y la glucosuria familiar al tratamiento de la diabetes mellitus tipo 2. Med. Clin. (Barc.)., 2013; 141 (Suppl. 2): 31–5.
  26. Makarova E., Górnaś P., Konrade I. et al. Acute anti-hyperglycaemic effects of an unripe apple preparation containing phlorizin in healthy volunteers: a preliminary study. J. Sci. Food. Agric., 2015; 95: 560–8.
  27. Ríos J.L., Francini F., Schinella G.R. Natural products for the treatment of type 2 diabetes mellitus. Planta Med., 2015; 81 (12-13): 975–94.
  28. Yabe D., Seino Y. Two incretin hormones GLP‑1 and GIP: comparison of their actions in insulin secretion and β-cell preservation. Prog. Biophys. Mol. Biol., 2011; 107: 248–56.
  29. Cernea S., Raz I. Therapy in the early stage: incretins. Diabetes Care, 2011; 34 (Suppl. 2): 264–71.
  30. Wang P., Alvarez-Perez J.C., Felsenfeld D.P. et al. A highthroughput chemical screen reveals that harmine-mediated inhibition of DYRK1A increases human pancreatic beta cell replication. Nat. Med., 2015; 21: 383–8.
  31. Combs A.P. Recent advances in the discovery of competitive protein tyrosine phosphatase 1B inhibitors for the treatment of diabetes, obesity, and cancer. J. Med. Chem., 2010; 53: 2333–44.
  32. Uddin M.N., Sharma G., Yang J.L. et al. Oleanane triterpenes as protein tyrosine phosphatase 1B (PTP1B) inhibitors from Camellia japonica. Phytochemistry, 2014; 103: 99–106.
  33. Pitschmann A., Zehl M., Atanasov A.G., Dirsch V.M., Heiss E., Glasl S. Walnut leaf extract inhibits PTP1B and enhances glucose-uptake in vitro. J. Ethnopharmacol., 2014; 152: 599–602
  34. Giacco F., Brownlee M. Oxidative stress and diabetic complications. Circ. Res., 2010; 107: 1058–70.
  35. Halliwell B. Free radicals and antioxidants: updating a personal view. Nutr. Rev., 2012; 70: 257–65.
  36. Oliveira J.S., Silva A.A.N., Silva Junior V.A. Phytotherapy in reducing glycemic index and testicular oxidative stress resulting from induced diabetes: a review. Braz. J. Biol., 2017; 77 (1): 68–78