ВЛИЯНИЕ ЭКСТРАКТА ЛОФАНТА АНИСОВОГО НА СВОБОДНО-РАДИКАЛЬНЫЕ ПРОЦЕССЫ В КРОВИ КРЫС

Скачать статью в PDF
DOI: https://doi.org/10.29296/25419218-2019-03-09
Номер журнала: 
3
Год издания: 
2019

Н.К. Кличханов(1), М.Д. Астаева(1), З.М. Шихамирова(1), Ш.И. Чалабов(1), А.Г. Тырков(2), М.М. Газимагомедова(3) 1-Дагестанский государственный университет; Российская Федерация, Республика Дагестан, 367000, Махачкала, ул. Гаджиева, д. 43-а;2-Астраханский государственный университет; Российская Федерация, 414056, Астрахань, ул.Татищева. д. 20-а;3-Дагестанский государственный медицинский университет; Российская Федерация, Республика Дагестан, 367000, Махачкала, пл. Ленина, д. 1

Введение. Лофант анисовый широко применяется в народной медицине, однако его биологические эффекты изучены недо-статочно. Имеются сведения о влиянии биологически активных компонентов лофанта на свободно-радикальные процессы, но пути и механизмы такого влияния не выяснены. Цель исследования – установить возможность регуляции свободно-радикальных процессов и цитокинетических характе-ристик крови крыс путем курсового приема экстракта лофанта анисового. Материал и методы. Исследование было выполнено на половозрелых крысах-самцах линии Vistar. Спиртовой (70%) экс-тракт травы лофанта получали методом перколяции. Количество эритроцитов определяли с помощью камеры Горяева, ретикулоцитов – в мазках после окрашивания бриллиантовым крезиловым синим. Цитокинетические показатели эритроцитарного баланса крови крыс определяли по методике Е.А. Липуновой и М.Ю. Скоркиной. Уровень продуктов окислительной модификации липидов устанавливали по содержанию малонового диальдеги-да, белков мембран эритроцитов – по накоплению карбонильных групп, реагирующих с 2,4-динитрофенилгидразином.Содержание восстановленного глутатиона в эритроцитах определяли методом Эллмана. Активность супероксиддисмутазы в гемолизатах оценивали по ингибированию аутоокисления адреналина в щелочной среде. Активность каталазы определяли спектрофотометрическим методом. Содержание гемоглобина устанавливали с помощью набора реагентов фирмы «Ольвекс Диагностикум», содержание белка в мембранах эритроцитов – методом Лоури.Результаты. Показано, что десятидневное потребление экстракта лофанта (75 мг/кг) существенно снижает содержание карбонильных групп в белках мембран эритроцитов, но не изменяет уровень тиоловых групп в мембранных белках малонового диальдегида и восстановленного глутатиона в эритроцитах. Прием лофанта анисового существенно увеличивает в эритроцитах активность супероксиддисмутазы и каталазы. Потребление экстракта лофанта снижает продолжительность жизни зрелых форм эритроцитов, но увеличивает поступление в кровоток молодых клеток, стимулируя костномозговое кроветворение у крыс. Заключение. Курсовой прием экстракта лофанта анисового повышает уровень антиоксидантной защиты эритроцитов и стимулирует костномозговое кроветворение у крыс.
Ключевые слова: 
лофант анисовый
Lophanthus anisatus Benth.
свободно-радикальные процессы
антиоксидантная защита
эритроциты
окислительная модификация белков
перекисное окисление липидов
восстановленный глутатион
супероксиддис-мутаза
каталаза
цитокинетика
Для цитирования: 
Кличханов Н.К., Астаева М.Д., Шихамирова З.М., Чалабов Ш.И., Тырков А.Г., Газимагомедова М.М. ВЛИЯНИЕ ЭКСТРАКТА ЛОФАНТА АНИСОВОГО НА СВОБОДНО-РАДИКАЛЬНЫЕ ПРОЦЕССЫ В КРОВИ КРЫС . Фармация, 2019; 68 (3): 49-54https://doi.org/10.29296/25419218-2019-03-09
Список литературы: 
  1. Великородов А.В., Ковалев В.Б., Тырков А.Г., Дегтярев О.В. Изучение химического состава и противогрибковой активности эфирного масла Lophantus anisatum Benth. Химия растительного сырья.,2010; 2: 143–6.
  2. Чумакова В.В., Попова О.И. Лофант анисовый (Agastache Foeniculum L.) – перспективный источник получе-ния лекарственных средств. Фармация и фармакология, 2013; 1: 41–6.
  3. Yurtaeva E.A., Remesova I.P., Luzhova S.A., Tyrkov A.G. The method for producing and chemical compensation extractives from Lophantus anisatum Benth. Int. Cnof. «Renewable plant resources: chemistry, technology, medicine». Saint Petersburg, 2017; 165–6.
  4. Рыбак О., Гудзь Н., Свиденко Л. и др. Роль раститель-ных адаптогенов и иммуномодуляторов в диетическом пита-нии и фитотерапии. Agrobiodiversity, 2017; 179–87. https://doi.org/10.15414/agrobiodiversity.2017.2585-8246
  5. Хлебцова Е.Б., Самотруева М.А., Магомедов М.М. и др. Иммунотропные свойства флавоноидов лофанта анисового. Фармация, 2012; 3: 46–8.
  6. Котюк Л.А. Вивчення антимікробної активності етанольного екстракту Lophanthus Anisatus Adans (Lamiaceae). Вісник ЛНУ імені Тараса Шевченка. ч. І., 2014; 10 (293): 53–61.
  7. Хлебцова Е.Б., Сорокина А.А., Сережникова Т.К., Турченков С.С. Лофант анисовый в комплексной терапии хро-нических заболеваний легких. Фармация, 2017; 66 (8 ): 45–8.
  8. Чумакова В.В., Попова О.И., Кодониди М.И. Изучение антиоксидантной активности извлечений травы лофанта анисового. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 2012; 12: 30–3.
  9. Тырков А.Г., Самотруева М.А., Прилучный С.В., Иглина Э.М., Хлебцова Е.Б. Способ получения иммунотропного средства как основы для препарата «Иммунофлан». Патент РФ № 249194. Опубл. БИ № 25 от 10.9.2013 г.
  10. Липунова Е.А., Скоркина М.Ю. К методике определения цитокинетических показателей эритроцитарного баланса крови птиц. Научные ведомости Белгородского государственного уни-верситета. Серия: Естественные науки, 2007; 5 (5): 65–8.
  11. Кличханов Н.К., Исмаилова Ж.Г., Астаева М.Д. Свободно-радикальные процессы в биологических системах. Махачкала: Изд. ДГУ, 2012; 188.
  12. Арутюнян А.В., Дубинина Е.Е., Зыбина Н.Н. Методы оценки свободно-радикального окисления и антиоксидантной системы организма. Методические рекомендации. СПб.: ИКФ «Фолиант», 2000; 104.
  13. Сирота Т.В. Использование нитросинего тетразолия в реакции автоокисления адреналина для определения актив-ности супероксиддисмутазы. Биомедицинская химия, 2013; 59 (4): 399–410.
  14. Aebi H. Catalase in vitro. Method. Enzymol., 1984; 105: 121–6. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(84)05016-3
  15. Дубинина Е.Е., Пустыгина А.В. Окислительная модификация протеинов, ее роль при патологических состояниях. Укр. біохім. журн., 2008; 80 (6): 5–18.
  16. Ferrali M., Signorini C., Caciotti B. et al. Protection against oxidative damage of erythrocyte membrane by the flavonoid quercetin and its relation to iron chelating activity. FEBS Lett., 1997; 416: 123–9. https://doi.org/10.1016/S0014-5793(97)01182-4.
  17. Тарун Е.И. Сравнение антиоксидантной активности галловой, кофейной и хлорогеновой кислот. Труды БГУ, 2014; 9 (1): 186–191.
  18. Neelam S., Kakhniashvili D.G., Wilkens S. et al. Functional 20S proteasomes in mature human red blood cells. Exp. Biol. Med., 2011; 236 (5): 580–91. https://doi.org/10.1258/ebm.2011.010394
  19. Jung U.J., Lee M.-K., Park Y.B. et al. Antihyperglycemic and antioxidant properties of caffeic acid in db/db mice. J. of Pharmacol. and Exper. Therapeutics, 2006; 318 (2): 476–83.
  20. Mohanty J.G., Nagababu E., Rifkind J.M. Red blood cell oxidative stress impairs oxygen delivery and induces red blood cell aging. Front. Physiol., 2014; 5 (84): 100–5. https://doi.org/10.3389/fphys.2014.00084